본 과제는 궐련형 전자담배의 의존성을 정량·정성으로 평가하고 기전을 규명하는 연구임. 일반궐련담배(표준담배(3R4F))와 비교하여 대뇌 보상계와 동물 행동 변화를 확인함.
연구목표는 궐련형 전자담배 제품 시료 표준화 후 보상계 내 신경화학물질 분비변화 측정과 동물 행동모델 기반 의존성 평가를 수행하는 데 있음. 1차년도는 궐련형 전자담배 배출물 추출법 확립, 실시간 도파민 분비·실시간 뇌 온도·글루타메이트 분비·BDNF 발현 및 분비 분석 수행, 2차년도는 설치류 조건장소선호도시험(dose-response), 자가투여시험(acquisition/reinstatement), 행동민감화, 동물초음파(50 kHz·22 kHz) 평가로 의존성 근거자료 확보함. 기대효과는 신규 의존성 평가 기술과 SOP 확립, 의존성 평가 가이드라인(안) 마련 및 담배 안전 통합 관리 체계 구축 기반 제공임.
청소년기 니코틴 의존성 형성 메커니즘: 신경교세포 BDNF 분비에 대한 대사성 글루타메이트 수용체(mGluRs)의 역할
▣ 1차년도: 성상세포에서 BDNF 발현 및 분비의 변화가 mGluRs 활성과 관련이 있는지를 뇌 보상계에서 니코틴 노출시기에 따른 이들의 관련성을 다음과 같은 실험을 통해 규명하고자 한다.
‧실험 1. 동물모델에서 니코틴 투여에 의한 의존성이 형성되는지 보행성 활동량 및 상동성을 측정하여 확인한다.
‧실험 2. 전기화학적으로 글루타메이트를 감지하는 바이오센서(biosensor)을 이용하여 뇌 보상계에서 니코틴 노출시기에 따른 글루타메이트의 분비를 실시간으로 측정하여 글루타메이트의 양적 변화가 니코틴 의존성의 형성에 관련이 있음을 규명한다.
‧실험 3. 행동과학, 전기화학적인 방법으로 도출된 결과(청소년기 니코틴 의존성 형성과 선조체 내 글루타메이트의 양적 변화)를 바탕으로 이들이 보상계 내 BDNF 발현 및 분비에 미치는 영향을 규명한다.
‧실험 4. 세포수준의 연구를 위해 성상세포 배양시스템을 구축하여 흥분성 신경전달물질인 글루타메이트에 의한 BDNF 발현 및 분비의 변화를 확인한다.
‧실험 5, 6. 성상세포 배양시스템을 이용하여 검증가능한 실험방법을 구축한다.
▣ 2차년도: 1차년도에서 구축한 성상세포 배양시스템 및 실험방법들을 이용하여 1) 성상세포에서 BDNF 발현 및 분비의 변화가 mGluRs 활성과 관련이 있는지를 규명한다.
2) 뇌 보상계 성상세포의 BDNF 분비에 대한 mGluRs의 역할을 의존성 행동실험인 조건장소선호도실험(conditioned place preference), 동물초음파측정실험(ultrasonic vocalization)을 통하여 청소년기 니코틴 의존성에 관여하는 mGluRs-BDNF의 기능을 최종적으로 확인한다.
‧실험 1-4. 약물학적으로 성상세포배양 시스템에서 group I 및 group II/III mGluRs에 의하여 조절되는 BDNF의 발현 및 분비 메커니즘을 규명한다.
‧실험 5. 실험 1-4에서 mGluRs 활성이 BDNF 분비에 관여한다면 이것은 뇌 보상계의 시냅스 가소성의 변화에 의해 니코틴 의존성이 형성되었다고 볼 수 있기 때문에 본 연구에서는 뇌 보상계 시냅스 가소성의 변화를 matrix metalloproteinase-2/9(MMP-2/9) 활성 정도를 통해서 확인한다.
‧실험 6. 니코틴 재발 모델에서 BDNF 수용체의 기능을 차단한 후 니코틴 ‘의존성 형성’ 정도를 조건장소선호도실험을 통해 확인한다.
‧실험 7. 니코틴 재발 모델에서 BDNF 수용체의 기능을 차단한 후 니코틴 ‘의존성 감정상태’를 동물초음파실험을 통해 확인한다.
본 과제는 담배 제품 성분이 사람에게서 의존성을 유발하는지 그 정도를 과학적으로 평가함으로써 담배규제정책과 안전관리를 위한 근거를 마련하는 연구임. FCTC 제9조·제10조 이행과 국민 건강 기여를 목표로 함.
연구목표는 담배 의존성 평가의 과학적 지표와 시험법 구축에 있음. 연구내용은 JNK에 의한 mGluRs(metabotropic glutamate receptors) 인산화를 세포수준·In vitro 스크리닝·In vivo 바이오센싱(real-time microbiosensing: 도파민 및 글루타메이트)·보행성활동량·조건장소선호도·자가투여·뇌 영역 국소투여·인지·정서행동(elevated plus maze)으로 검증하며 성별·나이 요인과 JNK 인과관계(phosphomimetic mutation) 분석을 수행함. 기대효과는 국가 담배규제 감시·감독 근거자료 구축, 금연 방법 기초자료 제공, 정책 활용성 제고 및 SCI 논문 게재임.
대사성 글루타메이트 수용체 인산화 및 소포체스트레스반응 조절에 의한 약물중독의 제어 및 바이오센서 개발
▣ 1차년도(2013.06~2014.05)
? Protein kinase에 의한 인산화는 효소가 결합(binding)하는 영역(domain)이 인산화 시키는(phosphorylation) 영역과 반드시 일치하지 않는다. 예비실험 결과 JNK1이 mGluR1a의 C-terminal (CT) 영역에서 결합하였으므로 이번 연구에서는 mGluR1a-CT내에서 JNK1이 인산화 시키는 세부영역을 규명한다. mGluR1a-CT의 인산화는 JNK1의 결합이 선행되어야하므로 2차년도 in vivo 연구를 위하여 JNK1의 결합을 방해하는 “결합억제성 펩타이드“와 이번 연구 결과를 바탕으로 mGluR1a 인산화 영역에 특이적인 "항체"를 제작한다. 또한, 소포체스트레스반응을 실시간으로 측정할 수 있는 바이오센서 제작을 위해 적절한 프루브 물질을 개발한다.
▣ 2차년도(2014.06~2015.05)
? 1차년도 in vitro 연구에서 규명한 결합 및 인산화 영역에 대한 결과를 바탕으로 이들 반응이 뉴런에서도 일어나는지 대뇌 보상계의 선조체(straitum) 조직에서 확인한다. 본 연구진의 선행연구에 의하면 글루타메이트의 인산화는 JNK의 활성화를 유도하고 활성화된 JNK는 소포체스트레스반응 단백질의 발현을 증가시키기 때문에, 이번 연구에서는 JNK1의 결합에 의한 mGluR1a-CT의 인산화가 소포체스트레스반응을 유발하는지 JNK1의 결합을 방해하는 “결합억제성 펩타이드“를 이용하여 확인하고자 한다. 또한, 1차년도의 개발한 프루브 물질을 바탕으로 이러한 소포체스트레스반응 단백질을 실시간으로 측정할 수 있는 면역센서를 제작한다.
▣ 3차년도(2015.06~2016.05):
? JNK1에 의한 mGluR1a-CT의 인산화가 약물중독의 형성에 미치는 영향을 규명하기 위하여 동물 행동모델(행동의 민감화 및 재발)에서 행동의 변화를 정량적으로 분석한다. 이를 통해 JNK1의 피드백 조절에 의해 인산화되는 mGluR1a-CT 영역이 약물중독의 형성에 기여함을 최종적으로 규명한다. 또한, 바이오센서의 최적화를 위한 통합시스템을 구축함으로써 JNK1에 의한 mGluR1a-CT 인산화 영역과 이 인산화에 의하여 발현이 조절되는 소포체스트레스반응 단백질들을 약물중독의 제어를 위한 분자타깃으로 설정한다.