[연구개발 내용]
? 7TM 기반 면역대사 질환 레졸루션 유전체 네트워크 규명과 7TM 효능제 개발
① 면역대사 질환의 레졸루션 촉진 새로운 표적분자들의 발굴
② 7TM 기반 레졸루션을 통한 면역대사 질환의 조절연구
③ CRISPR/Cas9 시스템 활용 유전자 편집 면역대사 질환 마우스 모델의 확립
④ 면역대사 질환에서 FFA4, GPR55 기능연구와 약물개발
? 대상질환연구: 비만 유래 지방간, 죽상동맥경화, 당뇨성 신장병증 등 면역대사 질환
[연차별 연구개발 내용]
? 1차년도
- FFA4를 통한 지방간 질환의 조절 기전의 규명과 새로운 표적발굴
- GPR55를 통한 지방간 발생 유도 기전의 규명과 유전체 네트워크 분석
- Privileged 구조 기반 화합물 라이브러리 구축 및 발굴 표적 스크리닝
- CRISPR/CAS9 기반 FFA4/GPR55 표적 유전자 교정 기술 플랫폼 구축
? 2차년도
- FFA4를 통한 죽상동맥경화증의 조절 기전의 규명과 새로운 표적발굴
- GPR55를 통한 죽상동맥경화증 촉진 기전의 규명과 유전체 네트워크 분석
- 구조활성관계 연구 기반 FFA4 및 GPR55 유효 리간드 발굴(세포 수준)
- CRISPR/CAS9 유전자 변이 기술 기반 형질 전환 세포주 구축
? 3차년도
- FFA4를 통한 당뇨성 신장병증의 만성염증상태의 레졸루션 조절 연구
- GPR55를 통한 당뇨성 신장병증의 대사저해 상태에서 만성염증촉진 기전의 규명과 네트워크 분석
- FFA4 및 GPR55 유효 물질의 in vivo 수준 표적 약리유효성 검증
- CRISPR/CAS9 유전자 변이 기술 기반 형질 전환 질환 동물 모델 구축
? 4-6차년도
- GPR119와 FFA2 및 신규표적 매개 면역대사 질환 심화 다층연구를 통하여, 7TM 기반 레졸루션 조절기전의 통합
◆ 아토피 피부염 동물모델을 이용한 in vivo 실험
1. 아토피 피부염 동물모델: DNCB을 이용한 면역감작과 귀에 도포를 통한 피부염 모델
- 림프절의 크기를 측정하여 염증정도를 확인하고, FFA4 효능제인 compound A와 S1P2의 길항제인 JTE-013에 의한 억제를 확인
- 림프절에서 분리한 mRNA를 사용하여 Th1 세포, Th2 세포, Th17 세포의 사이토카인을 RT-PCR을 통해 확인
- H&E 염색법과 Toluidine Blue O 염색법을 통해 귀 조직에서 귀 두께의 변화, 비만세포를 포함한 면역 세포의 축적을 확인
- 혈청에서 ELISA를 통해 IgE를 측정하여 비교
- 림프절에서 CD4+ FoxP3+ Treg의 증가를 유동 세포 분석법으로 확인
◆ 유전자 결손 BALB/c 마우스의 활용
1. FFA4 유전자 결손 마우스: BALB/c background의 FFA4 결손 마우스를 자체 제작하였으며, FFA4 유전자 결손 마우스에서 아토피 피부염 연구를 통하여 FFA4의 기능을 확인
2. S1P2 유전자 결손 마우스: BALB/c background의 S1P2 결손 마우스를 자체 제작하였으며, S1P2 유전자 결손 마우스에서 아토피 피부염 연구를 통하여 FFA4의 기능을 확인
◆ 수지상세포, T 세포, 비만세포를 이용한 in vitro 실험
1. 수지상 세포와 T 세포의 공생배양을 통한 기능연구
- T 세포와 수지상세포를 공생배양한 후, DNCB와 Compound A 또는 JTE-013를 각각 처리하여 유동 세포 분석법을 이용해 Treg 세포의 변화를 관찰
- FFA4와 S1P2 유전자 결손 마우스 (KO)로부터 분리한 수지상세포와 T 세포를 사용하여 FFA4 또는 S1P2에 의해 Treg 세포의 수가 변화하는지 확인
- Treg 세포에서 중요한 사이토카인인 IL-10과 TGF-β의 변화를 ELISA를 통하여 측정
2. 수지상 세포와 비만세포에서 기능 연구
- 골수 유래 수지상 세포의 maturation과 migration 과정에서 FFA4 효능제와 S1P2 길항제의 영향 연구
- FFA4와 S1P2 유전자 결손 마우스 (KO)로부터 분리한 수지상세포를 사용하여 maturation과 migration의 변화 연구
- 골수 유래 비만세포에서 Compound A와 AH7614를 농도별로 처리하여 β-hexosaminidase assay를 통하여 탈과립 정도를 측정
- FFA4와 S1P2 유전자 결손 마우스로 (KO)부터 분리한 비만세포를 이용하여 FFA4를 통한 Compound A와 JTE-013의 항알러지 효과를 관찰한다.
◆ TGF-α shedding assay를 활용
1. 새로운 FFA4의 효능제와 S1P2의 길항제 후보물질 탐색
- FFA4와 S1P2에 각각 높은 친화력을 가진 리간드를 찾기 위해 천연물로부터 분리한 물질과 제공받은 합성물질을 TGF-α shedding assay를 활용하여 기존의 효능제 또는 길항제와 비교하여 후보물질 발굴
- 이 후 docking study를 통해 FFA4, S1P2와 후보물질의 적합성 판단
본 과제는 스핑고신 1-인산(S1P)과 오메가 3 불포화지방산(n-3 PUFA) 같은 리피드 신호전달분자가 GPCR를 통해 폐질환(급성 폐손상, 폐섬유화, 알레르기성 천식)에 어떤 역할을 수행하는지 규명하는 연구임.
연구 목표는 S1P2 수용체와 n-3 PUFA 수용체 FFA4를 중심으로 유전자 결손 마우스 및 in vivo·in vitro 실험으로 병태생리적 역할과 분자수준 신호전달 기작을 밝히는 데 있음. BALB/c S1P2·FFA4 결손 마우스 제작, 나프탈렌·LPS·bleomycin·OVA 모델에서 기능 확인, Clara 세포·수지상세포·대식세포·비만세포·평활근세포에서 기작 분석 수행함. 기대 효과는 리피드-수용체 작용 이해 증대와 수용체 타겟 약물개발 기초정보 제공임.
본 과제는 스핑고신 1-인산(S1P)과 오메가 3 불포화지방산(n-3 PUFA) 같은 리피드 신호전달분자가 GPCR를 통해 폐질환에서 어떤 역할을 하는지 규명하는 연구임.
연구 목표는 S1P2 수용체와 FFA4 수용체 중심으로 급성 폐손상, 폐섬유화, 알레르기성 천식 동물모델 및 Clara세포·수지상세포·대식세포·비만세포·평활근세포 in vitro 실험을 통해 병태생리적 역할과 분자수준 신호전달 기작을 밝히는 데 있음. 기대효과는 리피드 신호전달 작용의 생리적 이해 증대, 수용체 타겟 약물개발 유도, 관련 연구인력 양성효과로 정리됨.